Iveta Varnagirytė‑Kabašinskienė
Paprastoji pipirnė. Nuotrauka autorės
1 pav. Sėjamąsias pipirnes galima auginti įvairiuose substratuose (kairėje kaip substratas naudojamas filtravimo popierius, dešinėje – dirvožemis). Nuotrauka autorės
Nors Europoje šis iš pietvakarių Azijos kilęs vienametis augalas paplitęs, Lietuvoje natūraliai augančių pipirnių randama itin retai. Daugeliui pipirnės žinomos kaip ant palangės auginti tinkami prieskoniniai augalai. Jos greitai dygsta, auga, nėra reiklios substratui (gali augti net vandenyje), lengva atlikti matavimus, nes nėra aukštos. Aplinkos poveikis nustatomas palyginus kontrolinių ir tiriamųjų pipirnių sėklų daigumą, daigų išvaizdą, šaknų ilgį ir (arba) stiebų aukštį, augalų masę (Wang 1991, Wundram ir kt. 1997, Kupčinskienė ir kt. 1998). Tinkamomis sąlygomis augančių sėjamųjų pipirnių svarbiausi morfologiniai[2] požymiai: plunksniškai karpyti arba skiautėti lapai, balti arba rožiniai į žiedynus susitelkę maži žiedai, mažos, šiek tiek plokščios, gelsvai rudos, beveik lygiu paviršiumi sėklos.
Dirvožemio tyrimai. Sėjamosios pipirnės
dažniausiai naudojamos oro, vandens ir dirvožemio taršos tyrimams. Vieni
žalingiausių transporto ir pramonės teršalų yra sunkieji metalai. Jie kaupiasi dirvožemyje,
augaluose ir keliauja mitybos grandine iki žmogaus. Didelės kadmio sankaupos
dirvožemyje mažina pasėlių produktyvumą, o pastarieji nuodingi gyviesiems
organizmams. Dirvožemio tarša sunkiaisiais metalais dažniausiai nustatoma
cheminiais metodais, tačiau tam galima naudoti ir sėjamąsias pipirnes. Kai
kadmio koncentracija dirvožemyje yra apie 100 mg/kg, sutrinka pipirnių fotosintezė,
jos lėčiau auga (Gill ir kt. 2012). Neretai teršalai stiprina vienas kito
poveikį. Pavyzdžiui, Czuba ir Ormrod (1981) nustatė, kad jaunesnius pipirnių lapus
labiau veikė kadmis nei ozonas, tačiau šio metalo poveikį ozonas sustiprino. Bendras
kadmio ir ozono poveikis sukėlė pipirnių daigų chlorozes (spalvos pokyčius) ir net
nekrozes (audinių žūtį).
Auginimas kiminų terpėje. Kitas taršos
tyrimo metodas – sėjamųjų pipirnių daiginimas ir auginimas kiminų terpėje
(Karalytė 2007, Žilinskaitė 2014). Kaip nurodo Žilinskaitė (2014), kiminų
terpėje auginamų pipirnių daigų vystymasis priklauso nuo kiminų sukauptų
teršalų koncentracijos. Pramonės ir transporto taršos tyrimams kaip teršalus
sugeriantis augalas gali būti naudojamas magelaninis kiminas (Sphagnum
magellanicum). Substratas sėjamosioms pipirnėms auginti ruošiamas iš
užterštoje aplinkoje surinktų ar tam tikrą laiką joje laikytų kiminų, pvz., iš užterštoje
įmonės teritorijoje, miesto intensyvaus transporto zonose įvairiu atstumu nuo
taršos šaltinio specialiuose maišeliuose ar tinkleliuose laikytų kiminų. Užterštoje
aplinkoje kiminus galima laikyti nuo 3 savaičių iki 6 mėnesių (Kupčinskienė
2011).
Dumblo toksiškumo tyrimai. Pipirnes
daiginant nuotekų dumble galima įvertinti dumblo fitotoksinį poveikį (kenksmingą
poveikį augalams), kurį sukelia jame esantys amonio junginiai, sunkieji
metalai, pesticidai, policikliniai aromatiniai angliavandeniliai ir kitos
medžiagos (Fuentes ir kt. 2006, Oleszczuk 2008). Toksinio
poveikio stiprumui įvertinti naudojamos tam tikros vertinimo skalės. Pavyzdžiui,
Marčiulionienė ir Montvydienė (2002) nuotekų dumblo toksiškumą tyrė įvairiais
bioindikatoriais, tarp jų ir sėjamąja pipirne. Tam buvo lyginami kontrolinių ir
tiriamųjų sėjamųjų pipirnių rodikliai. Jei jie skyrėsi ne daugiau kaip
20 proc., laikyta, kad dumblas nepasižymi toksiniu poveikiu, jei
20–40 proc. – toksinis poveikis silpnas, jei 40–60 proc. – toksinis
poveikis vidutinis, jei daugiau kaip 60 proc. – pasireiškia stiprus
toksinis poveikis.
Lapų nuokritų
toksiškumo tyrimai. Vieni įdomesnių
tyrimų, kuriuose kaip bioindikatorius naudojamos sėjamosios pipirnės – medžių
nuokritų toksiškumo tyrimai. Žinoma, kad po kai kurių rūšių medžių lajomis žoliniai
augalai prastai auga arba visai neauga. Nėra vieningos nuomonės ir svarių
mokslinių įrodymų, kokios priežastys tai lemia. Gali būti, kad žolinių augalų
dygimą ir augimą slopina kai kuriuose augaluose ir medžių nuokritose esantys fenoliniai junginiai (Reigosa
ir González 2006). Jie priskiriami
alelochemikalams – medžiagoms, neigiamai
veikiančioms augalų fiziologinius procesus. Šėžienė (2015) nurodo, kad alelochemikalai veikia augalų sėklų dygimą (jos
prasčiau ir vėliau sudygsta) ir pirminį daigų augimą. Didelė alelochemikalų
koncentracija augalus veikia neigiamai, o maža gali paveikti netgi teigiamai. Stipresnis
alelopatinis poveikis (vienų augalų poveikis kitiems per įvairias jų
išskiriamas medžiagas) pasireiškia augalams augant šalia vienas kito. Pavyzdžiui,
Melkania (1992) nustatė, kad pūvančios lapų nuokritos slopina pipirnių sėjinukų
augimą, užauginama mažiau biomasės. Palyginus įvairių augalų dalių poveikį
pipirnėms, paaiškėjo, kad labiausiai jų augimą slopino žaliuose lapuose
esančios medžiagos, silpniau – medžiagos, esančios lapų nuokritose ir medžių
šakelėse (Melkania 1992, Djurdjević ir kt. 2005).
Dėl šiltėjančio klimato Lietuvoje vis labiau
plinta svetimkraščių rūšių medžiai. Svetimkraštės rūšys – tai už
natūralaus arealo ribų gyvenančios ir besidauginančios rūšys, dar vadinamos
introdukuotomis, nevietinėmis, svetimžemėmis rūšimis. Svetimkraščiai medžiai itin greitai prisitaiko prie naujų sąlygų ir
neretai išstumia vietinius žolinius ir sumedėjusius augalus. 2011–2012 m.
Lietuvoje tirta, kaip svetimkraščių medžių lapai veikia pipirnių sėklų daigumą
ir daigų vystymąsi (Viltrakytė 2012). Šiam tyrimui buvo pasirinktas europinis
maumedis, paprastasis bukas ir raudonasis ąžuolas, kurių plotai Lietuvos
miškuose šiltėjant klimatui, tikėtina, didės. Labiausiai pipirnių sėklų dygimą slopino
raudonojo ąžuolo lapų nuokritos, o mažiausiai – paprastojo buko (2 pav.). Gali
būti, kad pastarosiose nuokritose buvo daugiausia maisto medžiagų. Literatūroje
nurodoma, kad raudonojo ąžuolo lapuose gausu fenolinių junginių, neigiamai
veikiančių žolinių ir sumedėjusių augalų sėklų dygimą ir daigų augimą (Djurdjević ir kt. 2005).
2 pav. Sėjamųjų
pipirnių sėklų daigumas (proc.) svetimkraščių medžių lapų nuokritų substrate.
Parengta pagal Viltrakytė 2012.
Kimura ir kt. (2015) tyrė, kokį poveikį raudonosios pušies medynų paklotė daro augalams. Paaiškėjo, kad didesnės koncentracijos pušyno paklotės ekstraktai slopina pipirnių augimą. Tikėtina, kad šių medžių spygliuose esančios aktyviosios medžiagos neigiamai veikia ir kitų augalų augimą. Tačiau tai tik pirminis augalų nuokritų toksiškumo tyrimo etapas. Toliau reikėtų gilintis į gerokai sudėtingesnius biocheminius procesus.
Sodininkystės ir daržininkystės institute atliekami
tyrimai su bioindikatoriais kintančios aplinkos sąlygomis. Tam naudojamos
klimato kameros, todėl galima reguliuoti augalus veikiančius aplinkos veiksnius,
pvz., apšvietimą, temperatūrą, anglies(IV) oksido, ozono koncentraciją.
Nustatyta, kad kylant oro temperatūrai didėja pipirnių atsparumas ozono
poveikiui (Brazaitytė ir kt. 2008). Šių tyrimų rezultatai svarbūs modeliuojant
augalų reakciją į šiltėjantį klimatą. Jei kaip bioindikatorius naudojamos sėjamosios
pipirnės, rezultatus galima gauti po keleto dienų, o jei sumedėję augalai – po 1–2 vegetacijos periodų[3] arba daugiau negu po pusantrų metų.
Pasiūlymai jauniesiems tyrėjams
Jaunieji
tyrėjai galėtų patyrinėti aplinkos (oro, dirvožemio, vandens, dumblo ir kt.)
užterštumą kaip bioindikatorių naudodami sėjamąsias pipirnes. Su šiais augalais taip pat galima atlikti trąšų,
cheminių medžiagų, buitinės chemijos (ploviklių, skalbiklių) ir maisto
pramonėje naudojamų priedų (acto, citrinos rūgščių, sodos) fitotoksiškumo testus.
Kartais kaip
pirminis oro užterštumo rodiklis naudojamas medžių žievės pH. Iš susmulkintos
medžių žievės paruoštame substrate galima daiginti ir auginti sėjamąsias pipirnes.
Reikėtų surinkti tos pačios rūšies ir panašaus amžiaus medžių, pvz., paprastosios
eglės ar karpotojo beržo, žievės mėginių. Rinkti reikėtų kiek įmanoma
panašesniu oru, geriau ne po intensyvaus lietaus. Dalis medžių turėtų augti užterštoje
(šalia judrios miesto gatvės, geležinkelio ar trąšų gamyklos), o kita dalis – santykinai
švarioje aplinkoje (mažiausiai 300 metrų atstumu nuo taršos šaltinių). Tokie
tyrimai nesudėtingi ir jiems atlikti pakanka paprastų priemonių.
Darbo priemonės
1. Sėjamosios pipirnės (Lepidium sativum) sėklos. Jų galima įsigyti sėklų parduotuvėse ar kitose prekybos vietose. Vienoje pakuotėje yra apie 5 g sėklų, o 1 g yra apie 400–500 sėklų. Tyrimams naudojamos sveikos, švarios, sausos neapdorotos sėklos.
2. Plastikinės arba stiklinės Petri lėkštelės. Lėkštelėse išdėliojama po 25 sėjamosios pipirnės sėklas 3 pav. parodyta arba kita tvarka. Svarbu, kad sėklos nebūtų labai arti viena kitos, t. y. užtektų vietos kiekvienai sėklai dygti ir augti. Vietoj Petri lėkštelių galima naudoti kitus vienodo skersmens (pvz., 9–10 cm) indus neaukštais kraštais (13–14 mm aukščio), kad neužstotų šviesos sudygusiems daigams.
3 pav. Sėjamosios pipirnės (Lepidium sativum) sėklų išdėliojimo Petri lėkštelėje tvarka. Nuotrauka autorės
3. Substratas: filtravimo popierius (4 pav.; tinka ir popieriniai rankšluosčiai) arba specialus substratas, pvz., smėlis, kompostas, medžių lapai, nuokritos, žievė, samanos. Popierius turi būti sausas, švarus, neužterštas cheminėmis medžiagomis, poringas, gerai sugerti vandenį, kad užtektų drėgmės sėkloms sudygti ir daigams augti. Substrato struktūra ir cheminė sudėtis priklauso nuo tyrimo tikslo.
4 pav. Sėjamosios pipirnės sėklos daiginamos (kairėje) ir daigai auginami (dešinėje) ant vandeniu drėkinamo filtravimo popieriaus. Nuotraukos autorės
4. Distiliuotas vanduo substratui drėkinti. Jei jo nėra, galima naudoti švarų vandenį iš čiaupo (vandens pH turi būti 6,0–7,5).
5. Matavimo švirkštas (matavimo cilindras, pipetė, stiklinė) vandens tūriui matuoti.
6. Indas vandeniui laikyti (laistoma apie 22 °C temperatūros vandeniu).
7. Milimetrinė liniuotė.
8. Pincetas arba lazdelė sėkloms Petri lėkštelėse išdėlioti.
9. Etiketės ar specialus rašiklis Petri lėkštelėms žymėti.
Kaip
atliekamas tyrimas
Labai svarbu tinkamai
susiplanuoti tyrimą. Taršos ir
fitotoksiškumo tyrimams pipirnės daiginamos ir auginamos vienodomis sąlygomis
(temperatūra, apšvietimas, drėgmė). Turi skirtis tik daiginimo substratas
(švarioje aplinkoje augusių medžių žievės substratas naudojamas kontrolei, o
užterštoje aplinkoje – toksiškumui tirti) arba pipirnės daiginamos ant
filtravimo popieriaus, tačiau kontrolinės laistomos distiliuotu vandeniu, o
tiriamosios – medžių žievės ekstraktais. Vieno substrato toksiškumui įvertinti
reikia mažiausiai 3, o dar geriau 5–7 Petri lėkštelių su pipirnės sėklomis.
Tiek pat Petri lėkštelių reikia paruošti ir kontroliniam eksperimentui. Sėklų
kiekis visose lėkštelėse turi būti vienodas, jos išdėstomos tokia pačia tvarka.
1. Paruošiamos Petri lėkštelės su substratu. Kaip tai
padaryti, priklauso nuo substrato (filtravimo popierius, susmulkinta medžių
žievė ir kt.). Jam sudrėkinti į visas Petri lėkšteles įpilama po 5–7 ml
vandens. Tam tinka švarus plastikinis švirkštas ar matavimo pipetė,
cilindras. Pipirnės sėklos daiginamos 48 val., todėl tikėtina, kad daugiau
jų laistyti nereikės. Tačiau substratas visada turi būti drėgnas – sėkloms sudygti
reikia vandens! Bet labai svarbu ir jo nepadauginti.
2. Visose Petri lėkštelėse išdėliojama po 25 sėjamosios
pipirnės sėklas. Jų reikėtų įsigyti daugiau, nes tyrimui būtina atrinkti iš
pažiūros sveikas sėklas.
3. Petri lėkštelės su sėklomis uždengiamos (uždengti reikėtų didesniąja lėkštelės dalimi)
ir pažymimos: nurodomos tyrimo sąlygos ar jas reiškiantis simbolis ir lėkštelės
numeris. Lėkštelės žymimos aiškiai, kad būtų galima lengvai atsekti kokiomis
sąlygomis daiginti augalai. Šią informaciją ir eksperimento pradžios datą būtina
registruoti, geriausia, kompiuteryje (pvz., A – 1; sėklų daiginimo sąlygos: 18–20 °C temperatūra, švarioje
aplinkoje augusių medžių žievių substratas, 1 lėkštelė). Tyrimui paruoštas
Petri lėkšteles galima nufotografuoti.
4. Praėjus
48 val. vertinamas sėklų daigumas[4].
Suskaičiuojama, kiek kiekvienoje Petri lėkštelėje sudygo sėklų. Sudygusia laikoma sėkla su sveiku
daigu (yra pagrindinės daigo dalys), iš kurios, numanoma, išaugs normalus
augalas. Sėklos, kurios liko kietos, neišbrinkusios arba išbrinko vandenyje,
tačiau daigas per tyrimui numatytą laiką neišaugo, laikomos nesudygusiomis
(5 pav.). Sėklų daigumas procentais (x)
apskaičiuojamas pagal formulę x = b/a × 100; čia a pradinis
sėklų skaičius (šiuo atveju 25 sėklos), o b – sudygusių
sėklų skaičius. Apskaičiuojamas kiekvienos Petri lėkštelės sėklų daigumas.
Duomenys registruojami lentelėje, pvz., Excel programa.
5 pav.
Sudygusios ir nesudygusios sėjamosios pipirnės sėklos. Nuotrauka autorės
5. Įvertinus
sėklų daigumą, Petri lėkštelės atidengiamos ir pipirnės tomis pačiomis sąlygomis
auginamos dar 72 val. Tuo metu jos laistomos (visos lėkštelės vienodai) nedideliu
kiekiu distiliuoto vandens, kad substratas neišdžiūtų. Praėjus 120 val.
(penkioms paroms) nuo eksperimento pradžios, po vieną daigą dedama ant
liniuotės ir matuojamas stiebo aukštis (matuojama tiesi, plona daigo stiebo
dalis iki šaknies) ir šaknies ilgis (matuojama
tiesi, pagrindinė šaknis iki galiuko;
6 pav.). Duomenys registruojami
lentelėje. Šiam tyrimo etapui reikia nemažai laiko ir kruopštumo!
6 pav. Daigo stiebo aukščio (viršuje) ir šaknies ilgio (apačioje) matavimas. Nuotraukos autorės
6. Kiekvienas
daigas papildomai apžiūrimas, įvertinamas jo išsivystymas ir suskaičiuojama,
kiek kiekvienoje lėkštelėje yra normalių daigų. Jais laikomi sveiki
daigai (visos pagrindinės daigo dalys yra gerai išsivysčiusios, proporcingos ir
sveikos), taip pat daigai su nežymiais
trūkumais ir antrinės infekcijos
pažeisti daigai (daigai, kuriuos būtų galima priskirti sveikiems daigams
arba daigams su nežymiais trūkumais, jei nebūtų paveikti grybinės ar bakterinės
infekcijos, atsiradusios ne dėl sėklos, bet kito infekcijos šaltinio). Nenormalūs
daigai – tai silpni, pažeisti, neproporcingai išsivystę, neturintys kurios nors
pagrindinės dalies ar supuvę daigai. Normalių daigų kiekis procentais (y) apskaičiuojamaspagal formulę y = c/d × 100;
čia c – normaliai išsivysčiusių daigų skaičius
lėkštelėje, o d – visi daigai
lėkštelėje. Apskaičiuojamas normalių
daigų kiekis (proc.) kiekvienoje Petri lėkštelėje ir duomenys registruojami
lentelėje.
Duomenų
analizė
Duomenis analizuoti galima įvairiomis programomis, tačiau šiam tyrimui užtenka programos Excel galimybių. Reikia apskaičiuoti kontrolinių ir tiriamųjų augalų rodiklių (sėklų daigumo, normaliai išsivysčiusių daigų kiekio, augalų stiebo aukščio ir šaknies ilgio) vidurkį. Taip pat labai svarbu įvertinti augalų matmenų sklaidą, kuri atsiranda dėl matavimo paklaidų ir pačių augalų skirtumų. Jeigu matuosite kruopščiai, matavimo paklaidos bus mažesnės už natūralią augalų matmenų sklaidą. Tokiu atveju apskaičiuotas augalo matmenų standartinis nuokrypis rodys natūralią stiebo aukščio ar šaknies ilgio sklaidą, o vidurkio standartinis nuokrypis rodys, kiek apskaičiuotas matavimų vidurkis gali skirtis nuo tikrosios vertės. Daugiau apie statistinius metodus ir duomenų analizę rasite Jaunojo tyrėjo vadovo A ir C tomuose.
Jaunųjų tyrėjų dėmesiui
Jei taršos tyrimus atliksite
nekontroliuojamomis aplinkos sąlygomis, pvz., dalis eksperimentų bus atlikta
18 °C temperatūroje, o dalis – 22 °C ar net daugiau, šis temperatūros pokytis turės įtakos jūsų
tyrimo rezultatams. Juk pipirnių augimas priklauso nuo temperatūros! Ir visai
nesvarbu, kur jas auginsite: tyrimų centro ar savo namų palėpėje įrengtoje
laboratorijoje. Todėl būtina per visą tyrimą išlaikyti vienodą aplinkos
temperatūrą. Prieš imdamiesi taršos tyrimų nustatykite, kaip nuo aplinkos
temperatūros priklauso sėjamosios pipirnės sėklų daigumas. Pirma, taip įgysite
patirties, o antra – turėdami šiuos duomenis
galėsite įvertinti, kaip aplinkos temperatūra paveikė jūsų taršos tyrimo
rezultatus. Sėjamosios pipirnės sėklas reikėtų daiginti įvairioje temperatūroje,
pvz.: 16 °C, 18 °C, 20 °C, 22 °C, 24 °C ir 26 °C.
Daigumui kiekvienoje temperatūroje nustatyti paruoškite po tris Petri lėkšteles
su sėklomis (kaip tai padaryti jau aptarėme). Kaip substratą naudokite vandeniu
sudrėkintą filtravimo popierių. Sėklų daigumą įvertinkite taip, kaip jau buvo
aprašyta. Nubraižykite diagramą, kurioje matytųsi, kaip jis priklauso nuo
temperatūros: X ašyje nurodykite temperatūrą, o Y ašyje – vidutinį sėklų
daigumą (proc.). Nepamirškite apskaičiuoti ir diagramoje pavaizduoti visų
bandymų standartinių nuokrypių.
Literatūra
Augustaitis A., Kliučius A. 1996,
Kerpės kaip aplinkos užterštumo bioindikatoriai. Miškininkystė, 1 (37), 70–79.
Blagnytė R., Paliulis D. 2010, Research into Heavy Metals Pollution of Atmosphere Applying Moss as Bioindicator: a Literature Review. Environmental Research, Engineering and Management, 4 (54), 26–33, https://www.researchgate.net/publication/49966006_Research_into_Heavy_Metals_Pollution_of_Atmosphere_Applying_Moss_as_Bioindicator_a_Literature_Review
Brazaitytė A., Juknys R.,
Sakalauskaitė J. ir kt. 2008, Ekofiziologiniai tyrimai kintančios aplinkos
sąlygomis. Sodininkystė ir daržininkystė,
27 (3), 263–276.
Czuba M., Ormrod D. P. 1981,
Cadmium concentrations in cress shoots in relation to cadmium‑enhanced ozone
phytotoxicity. Environmental Pollution
Series A, Ecological and Biological,
25 (1), 67–76, http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/014314718190115X
Davies L., Bates J. W., Bell J. N.
B., James P. W., Purvis O. W. 2007, Diversity and sensitivity of epiphytes to
oxides of nitrogen in London. Environmental Pollution, 146 (2), 299–310, https://doi.org/10.1016/j.envpol.2006.03.023
Djurdjević L., Mitrović M., Dinić
A. ir kt. 2005, Allelopathic investigations of Quercus conferta and Quercus cerris domination in oak forest at Avala
Mt. (Serbia), 28–31. In: Proceedings of the 4th World Congress on Allelopathy.
Establishing the Scientific Base Wagga Wagga New South Wales, Australia, 21–26
August 2005, http://www.regional.org.au/au/allelopathy/2005/2/1/2499_djurdjevicl.htm
Frati L., Brunialti G., Loppi S.
2008, Effects of reduced nitrogen compounds on epiphytic lichen communities in
Mediterranean Italy. Science of The Total Environment, 407 (1), 630–637, https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2008.07.063
Fuentes A., Lloréns M., Sáez J. ir
kt. 2006, Ecotoxicity, phytotoxicity and extractability of heavy metals from
different stabilised sewage sludges. Environmental
Pollution, 143 (2), 355–360, https://doi.org/10.1016/j.envpol.2005.11.035
Gill S. S., Khan N. A., Tuteja N. 2012,
Cadmium at high dose perturbs growth, photosynthesis and nitrogen metabolism
while at low dose it up regulates sulfur assimilation and antioxidant machinery
in garden cress (Lepidium sativum L.). Plant Science, 182, 112–120, https://doi.org/10.1016/j.plantsci.2011.04.018
Karalytė L., Stambių pramonės
įmonių teršalų vertinimas biotestavimo metodu, magistro darbas, Lietuvos žemės ūkio universitetas,
Kaunas, 2007,
http://vddb.library.lt/fedora/get/LT-eLABa-0001:E.02~2007~D_20070816_153401-19958/DS.005.0.01.ETD
Kimura
F., Sato M., Kato‑Noguchi H. 2015, Allelopathy of pine litter: Delivery of
allelopathic substances into forest floor. Journal
of Plant Biology, 58 (1), 61–67, https://doi.org/10.1007/s12374-014-0322-8
Kupčinskienė E., Ramaškevičienė A.,
Jankauskaitė R., Sliesaravičius A. 1998, Reaction of seedlings of Lepidium
sativum L. to the treatment with airborne pollutans in low concentrations. Sodininkystė ir daržininkystė, 17 (3), 413–422.
Kupčinskienė E. Aplinkos fitoindikacija. Kaunas, 2011.
Latif M., Zach A. 2000, Toxicity
studies of treated residual wastes in Austria using different types of conventional
assays and cost‑effective microbiotests, 367–383. In Perssone G., Janssen C.,
De Coen W. (eds.), New Microbiotests for Routine Toxicity Screening and Biomonitoring, Springer,
Boston, MA, https://doi.org/10.1007/978-1-4615-4289-6_42
Marčiulionienė D., Montvydienė D.
2002, Augalų testorganizmų panaudojimas ekotoksikologiniams tyrimams. Botanica Lithuanica, 4, 75–90.
Melkania N. P. 1992, Allelopathy in
forest and agroecosystems in the Hymalayan region, 371–388. In Rizvi S. J. H.,
Rizvi V. (eds.), Allelopathy: basic and
applied aspects, Springer, Dordrecht, https://doi.org/10.1007/978-94-011-2376-1_22
Oleszczuk P. 2008, Phytotoxicity of
municipal sewage sludge composts related to physico‑chemical properties, PAHs
and heavy metals. Ecotoxicology and
Environmental Safety, 69 (3), 495–505, https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2007.04.006
Reigosa M. J., González L. 2006,Forest ecosystems and allelopathy, 451–463.
In Reigosa M. J., Pedrol N., González
L. (eds.) Allelopathy: A Physiological Process with Ecological Implications,
Springer, Netherlands.
Temple P. J., McLaughlin D. L., Linzon S. N., Wills R. 1981,
Moss Bags as Monitors of Atmospheric Deposition. Journal of the Air Pollution Control Association, 31 (6), 668–670, https://doi.org/10.1080/00022470.1981.10465261
Viltrakytė M., Svetimkraščių
medžių (europinio maumedžio, paprastojo buko, raudonojo ąžuolo) medynų įtaka
dirvožemio mikrobiotai, magistro
darbas, Aleksandro Stulginskio universitetas, Kaunas, 2012, http://vddb.library.lt/fedora/get/LT-eLABa-0001:E.02~2012~D_20120620_151709-39629/DS.005.0.01.ETD
Wang W. 1991, Literature review on
higher plants for toxicity testing. Water,
Air and Soil Pollution, 59 (3–4), 381–400, https://doi.org/10.1007/BF00211845
Wundram
M., Selmar D., Bahadir M. 1997, Representative evaluation of phytotoxicity –
reliability and peculiarities. Angewandte Botanik [Journal of Applied Botany], 71 (5–6), 139–143, http://eurekamag.com/research/003/256/003256815.php
Žilinskaitė M., Pramonės
įmonių teršalų vertinimas pasyviosios lichenoindikacijos, pasyvaus kaupimo ir
biotestavimo metodais, magistro
darbas, Aleksandro Stulginskio universitetas, Akademija, 2014, http://vddb.library.lt/fedora/get/LT-eLABa-0001:E.02~2014~D_20140613_100255-50798/DS.005.0.01.ETD
Šėžienė
V. 2015, Plynų kirtaviečių dominantų alelopatinis poveikis brukninių
pušynų atkūrimui kintant klimato sąlygoms. Daktaro disertacija. Kaunas: VDU, p.
125.
[1] http://sveikata.su.lt/sveika_aplinka/kerpiu.htm
[2] Morfologiniai požymiai – augalo stiebo, lapų ir kt. dalių forma, kiti išoriniai požymiai.
[3] Augalų vegetacija – tai laikotarpis, kurio vidutinė paros oro temperatūra didesnė nei 5 °C. Lietuvoje vegetacijos sezonas trunka vidutiniškai 173 dienas, tačiau prognozuojama, kad ateityje dėl klimato šiltėjimo turėtų ilgėti.
[4] Plačiau apie sėklų daigumo
vertinimą skaitykite https://e-seimas.lrs.lt/portal/legalActPrint/lt?jfwid=32wf7o6h&documentId=TAIS.220717&category=TAD.